北京DNA纯化

DNA分选纯化试剂盒分离的RNA和DNA具有高质量和完整性，适用于所有下游应用，包括PCR，qPCR，RT-PCR，qRT-PCR，Northern印迹，Southern印迹和测序反应。
DNA分选纯化试剂盒的主要特点是既可以分散于液体中，也可以在外加磁场作用下以固态方式和液相分离，任何试剂体系，磁珠和液体的比例都应该是有一定阈值的，**过一定的比例，过多的磁珠将因为无法均匀分散于液体中，而丧失其分散的特性，也使得洗涤过程中无法充分增加核酸磁珠和液体接触的效率。
而过量的磁珠也会吸附更多的杂质，对于除杂的效果影响非常大。甚至有些时候，过多的磁珠会吸附蛋白酶、溶菌酶等在液体体系中起主要作用的功能成分，导致整个试剂盒效率低下。有很多时候，在提取效果不佳的时候，减少磁珠使用量，反而是提升提取效果的较好途径。

DNA分选纯化试剂盒的检测结果符合药用标准。与传统实验室方法相比，此工艺生产流程可避免使用有毒试剂（氯仿）和动物源性酶类（RNase A），确保了产品的安全性的同时，也减少了检测有毒试剂残余量的繁琐步骤；此工艺使用的大都是价格低廉的国产试剂，所用的材料和设备（凝胶、反应器等），可以反复再生使用。

DNA分选纯化试剂盒通过实时PCR（SYBR Green）检测大肠杆菌16SrDNA，通过提供的0.45μm水过滤柱过滤加入过量大肠杆菌的50mL水样，同时分离总RNA和DNA，并进行实时PCR。发现含有不同大肠杆菌量的所有测试水样都对应于实时PCR结果。通过大肠杆菌16S rDNA引物特检测到大肠杆菌，其浓度低至102cfu /ml，表明DNA的高质量和过滤系统的率。

通常情况下，DNA分选纯化试剂盒给出的参考磁珠用量都是略微过量的，因此需要增加磁珠用量改善吸附效率的情况并不多，但如果确定是磁珠用量不足导致的提取效果不好，是可以在一定范围内通过增加磁珠用量来改善提取效果的。
以GNT-02系列磁珠为例，在提取常量样本（植物组织，全血等）时，通常用量为10ul/次；在提取微量样本（如血清游离DNA，口腔拭子等）时，磁珠用量为15~20ul/次。

DNA分选纯化试剂盒的产品特点：
1、速度快。
15 min完成DNA回收，可同时处理多个样品，节省时间。
2、步骤少。
操作简单，几次离心即可完成。
3、效率高。
特别的离心柱和精心配制的缓冲液保证每次能大量回收。
4、纯度很高的目的DNA。
5、处理量大。
每个离心吸附柱每次至多可吸附的DNA量为10μg。

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